Capítulo 01 — Fundamentos y Biología de la Regeneración
Referencia rápida personal | Medicina Regenerativa — Consulta clínica
§1 Cicatrización vs Regeneración — Conceptos Clave
Reparación = sustitución por tejido fibrótico (cicatriz) sin función original.
Regeneración = restitución de arquitectura y función del tejido dañado.
En humanos adultos la regeneración completa se limita a pocos tejidos: hígado (hasta 70% de resección), epidermis, endometrio, médula ósea. El resto cicatriza con fibrosis mediada por colágeno tipo I depositado por miofibroblastos.
Modelos biológicos de regeneración
| Organismo |
Capacidad |
Mecanismo clave |
| Axolotl (Ambystoma mexicanum) |
Extremidades completas, corazón, médula espinal |
Desdiferenciación → blastema → rediferenciación |
| Pez cebra (Danio rerio) |
Corazón, aleta, retina |
Cardiomiocitos desdiferenciados + proliferación |
| Salamandra |
Extremidades, cola, mandíbula |
Blastema + re-patterning por gradientes Shh/Wnt |
| Humano |
Hígado, epidermis, hueso (fracturas), endometrio |
Células progenitoras residentes + señalización paracrina |
| Humano (limitado) |
Cartílago, miocardio, SNC |
Capacidad mínima → fibrosis predominante |
Reparación vs Regeneración — Comparación directa
| Parámetro |
Reparación (cicatrización) |
Regeneración |
| Resultado histológico |
Cicatriz fibrosa (colágeno tipo I desorganizado) |
Tejido funcional idéntico o similar al original |
| Célula protagonista |
Miofibroblasto (α-SMA⁺) |
Célula progenitora / stem cell residente |
| Señalización dominante |
TGF-β1 → fibrosis |
Wnt, Notch, Shh, FGF → morfogénesis |
| Vascularización |
Neoangiogénesis desorganizada |
Angiogénesis regulada con patrón arquitectónico |
| Inflamación |
Prolongada, no resuelta |
Transitoria, con resolución activa (SPMs) |
| Resultado funcional |
Parcial (contractura, rigidez) |
Completo o casi completo |
| MEC |
Fibrótica, rígida, cross-linked |
Organizada, biomecánicamente competente |
| En humanos adultos |
Predominante (piel, músculo, corazón) |
Excepcional (hígado, hueso, epidermis) |
Concepto central para medicina regenerativa
La estrategia regenerativa busca inclinar la balanza del continuo reparación ↔ regeneración
hacia la regeneración, mediante: (1) células, (2) scaffolds, (3) señales bioquímicas,
(4) estímulos mecánicos, (5) modulación del microambiente (hipoxia, inflamación controlada).
Triada de la ingeniería tisular:
CÉLULAS
/ \
/ TEJIDO \
/ FUNCIONAL \
/_______________\
SCAFFOLDS -------- SEÑALES
(MEC/biomateriales) (GFs, citoquinas,
fuerzas mecánicas)
§2 Cascada de Cicatrización — Las 4 Fases
Diagrama temporal con solapamiento de fases
Tiempo: 0h 6h 1d 3d 5d 7d 14d 21d 3m 6m 1a 2a
| | | | | | | | | | | |
FASE 1 |=====| | | | | | | | | | |
HEMOSTASIA | | | | | | | | | | |
(0-6h) | | | | | | | | | | |
| | | | | | | | | | |
FASE 2 |=====+=====+=====+=====| | | | | | |
INFLAMACION | | | | | | | | | | |
(6h - 5d) | | | | | | | | | | |
| | | | | | | | | | |
FASE 3 | | | |=====+=====+=====+=====| | | |
PROLIFERACION | | | | | | | | | | |
(3d - 21d) | | | | | | | | | | |
| | | | | | | | | | |
FASE 4 | | | | | | |=====+=====+=====+=====|
REMODELACION | | | | | | | | | | |
(14d - 2 anios)| | | | | | | | | | |
Tabla detallada por fase
| Fase |
Duración |
Células clave |
Mediadores clave |
Evento principal |
Relevancia clínica |
| 1. Hemostasia |
0–6 h |
Plaquetas, fibrina |
PDGF, TGF-β1, trombina, fibrinógeno, tromboxano A2 |
Coágulo de fibrina, vasoconstricción, liberación de gránulos α plaquetarios |
Base del PRP: los gránulos α contienen >300 proteínas bioactivas |
| 2. Inflamación |
6 h – 5 d |
Neutrófilos (pico 24-48h), macrófagos M1 (pico 48-96h), mastocitos |
IL-1β, IL-6, TNF-α, MCP-1, ROS, NO, MMP-2/9 |
Limpieza de debris, señalización quimiotáctica, defensa antimicrobiana |
AINEs en esta fase pueden retrasar/alterar cicatrización [B] (Wheatley 2006) |
| 3. Proliferación |
3–21 d |
Fibroblastos, queratinocitos, células endoteliales, macrófagos M2, MSCs |
VEGF, FGF-2, TGF-β, IGF-1, PDGF-BB, KGF |
Angiogénesis, tejido de granulación, re-epitelización, depósito MEC |
Ventana óptima para aplicación de PRP/PRF (sinergia con GFs endógenos) |
| 4. Remodelación |
21 d – 2 años |
Fibroblastos, miofibroblastos, MMPs/TIMPs |
MMP-1, -2, -3, -9, TIMP-1, -2, lisil oxidasa |
Maduración colágeno (III→I), cross-linking, contracción, apoptosis miofibroblastos |
Fuerza tensil máxima: 80% del tejido original (nunca 100%). Microneedling actúa reiniciando esta fase |
Transición macrófago M1 → M2 (punto de inflexión regenerativo)
| Fenotipo |
Marcadores |
Función |
Estímulo de polarización |
| M1 (pro-inflamatorio) |
CD80, CD86, iNOS, IL-12⁺ |
Fagocitosis, killing bacteriano, presentación antigénica |
IFN-γ, LPS, TNF-α |
| M2a (reparador) |
CD163, CD206, Arg-1, IL-10⁺ |
Depósito MEC, angiogénesis, resolución |
IL-4, IL-13 |
| M2c (regulador) |
CD163, TGF-β⁺, IL-10⁺ |
Remodelación MEC, fibrinolisis |
IL-10, glucocorticoides |
La transición M1→M2 es el interruptor clave de la regeneración. Las MSCs y el secretoma exosomal facilitan esta polarización [B] (Bernardo 2013, Zhao 2019).
§3 Factores de Crecimiento — El Arsenal Molecular
Tabla maestra de factores de crecimiento
| Factor |
Isoformas principales |
Fuente celular |
Tejido diana / acción primaria |
Relevancia clínica en regenerativa |
| PDGF |
αα, ββ, αβ, AB |
Plaquetas (gránulos α), macrófagos, células endoteliales |
Quimiotaxis fibroblastos/MSCs, proliferación, angiogénesis |
Principal GF liberado en PRP (concentración 3-8x sobre basal) [A] |
| TGF-β |
β1, β2, β3 |
Plaquetas, macrófagos, fibroblastos, osteoblastos |
Síntesis MEC (colágeno, fibronectina), diferenciación, inmunomodulación |
TGF-β1: pro-fibrótico; TGF-β3: anti-cicatriz (scarless fetal healing) [B] (Shah 1995) |
| VEGF |
A, B, C, D |
Plaquetas, macrófagos, queratinocitos, células hipóxicas |
Angiogénesis, vasculogénesis, permeabilidad vascular |
Clave en revascularización de injertos grasos. Inducido por HIF-1α bajo hipoxia |
| IGF-1 |
IGF-1 |
Hígado (endocrino), fibroblastos, osteoblastos (paracrino) |
Proliferación celular, síntesis proteica, supervivencia (anti-apoptosis) |
Presente en PRP. Sinergia con PDGF para proliferación fibroblástica |
| FGF |
FGF-2 (básico), FGF-1 (ácido), FGF-7 (KGF) |
Macrófagos, fibroblastos, queratinocitos |
FGF-2: angiogénesis, proliferación fibroblástica. FGF-7/KGF: re-epitelización |
FGF-2 en PRP estimula neovascularización del injerto graso [B] |
| EGF |
EGF |
Plaquetas, macrófagos, glándulas salivales |
Proliferación y migración epitelial, síntesis colágeno |
Aplicación tópica en úlceras. Presente en PRP y exosomas |
| HGF |
HGF |
Fibroblastos, MSCs, células hepáticas |
Anti-fibrótico, motogénesis (scatter factor), regeneración hepática |
Secretado por MSCs: principal mediador anti-fibrótico del secretoma [B] (Caplan 2017) |
| KGF (FGF-7) |
KGF |
Fibroblastos dérmicos |
Re-epitelización, proliferación queratinocitos basales |
Palifermin (KGF recombinante) aprobado para mucositis [A] |
| BMP |
BMP-2, BMP-7 |
Osteoblastos, condrocitos, MSCs |
Osteogénesis, condrogénesis, diferenciación mesenquimal |
BMP-2: aprobado para fusión espinal y fracturas no unión [A]. BMP-7 (OP-1): uso off-label articular |
| SDF-1 (CXCL12) |
SDF-1α |
Células estromales, osteoblastos, células endoteliales |
Quimiotaxis y homing de MSCs y progenitores CD34⁺ |
Reclutamiento de stem cells circulantes al sitio de lesión |
Concentración de GFs en PRP vs sangre total
| Factor de crecimiento |
Sangre total (pg/mL) |
PRP (pg/mL) |
Factor de concentración |
Ref. |
| PDGF-AB |
5.3 ± 1.2 |
31.5 ± 8.4 |
~6x |
Marx 2004 [B] |
| TGF-β1 |
35 ± 11 |
165 ± 42 |
~4.7x |
Marx 2004 [B] |
| VEGF |
54 ± 18 |
280 ± 95 |
~5.2x |
Weibrich 2002 [B] |
| IGF-1 |
84 ± 23 |
120 ± 35 |
~1.4x |
Weibrich 2002 [B] |
| EGF |
1.5 ± 0.6 |
7.2 ± 2.8 |
~4.8x |
Anitua 2004 [B] |
| FGF-2 |
3.2 ± 1.1 |
9.8 ± 3.2 |
~3x |
Dohan Ehrenfest 2009 [B] |
| HGF |
0.8 ± 0.3 |
2.1 ± 0.9 |
~2.6x |
Dohan Ehrenfest 2009 [B] |
Concentración plaquetaria óptima terapéutica: 1.0–1.5 × 10⁶ plaquetas/μL (4-6x basal).
Concentraciones >1.8 × 10⁶/μL pueden ser inhibitorias [B] (Giusti 2009).
Presencia de GFs por producto biológico
| Factor |
PRP |
PRF (L-PRF/A-PRF) |
Injerto graso (SVF) |
Exosomas MSC |
Plasma rico en GF (PRGF-Endoret) |
| PDGF |
+++ |
++ (liberación sostenida 7-14d) |
+ |
+ |
+++ |
| TGF-β1 |
+++ |
+++ |
++ |
++ |
++ |
| VEGF |
++ |
+++ (pico día 7-14) |
++ |
++ |
++ |
| IGF-1 |
++ |
+ |
++ |
+ |
++ |
| FGF-2 |
++ |
++ |
++ |
+++ |
+ |
| EGF |
++ |
+ |
+ |
++ |
++ |
| HGF |
+ |
+ |
+++ (ASCs secretan) |
+++ |
+ |
| BMP-2 |
– |
– |
+ (con ASCs diferenciadas) |
+ |
– |
| SDF-1 |
+ |
+ |
++ |
++ |
+ |
| Exosomas |
+ (plaquetarios) |
+ |
+++ |
+++++ |
+ |
PRF ventaja clave: liberación lenta y sostenida de GFs (hasta 14 días) por atrapamiento en malla de fibrina [B] (Dohan Ehrenfest 2009). PRP: liberación burst en primeras 1-2h post-activación.
Componentes principales de la MEC
| Componente |
Tipo |
Localización principal |
Función |
Producto clínico ejemplo |
| Colágeno tipo I |
Proteína fibrilar |
Dermis, hueso, tendón, fascia |
Resistencia tensil, scaffold estructural |
Integra®, MatriDerm®, Bio-Gide® |
| Colágeno tipo III |
Proteína fibrilar |
Dermis reticular (fetal > adulto), vasos, útero |
Elasticidad, asociado a tejido joven/regenerativo |
Presente en tejido de granulación |
| Colágeno tipo IV |
Proteína reticular |
Membrana basal |
Filtración, anclaje epitelial, señalización |
Componente de matrices dérmicas acelulares |
| Elastina |
Proteína fibrilar |
Dermis, pared arterial, pulmón, ligamentos |
Retroceso elástico, resiliencia |
Matriderm® (colágeno + elastina) |
| Fibronectina |
Glicoproteína |
MEC intersticial, plasma |
Adhesión celular (RGD → integrinas), migración, opsonización |
Fibrina rica en fibronectina (PRF) |
| Laminina |
Glicoproteína |
Membrana basal |
Adhesión, migración, diferenciación epitelial |
Componente de BM en matrices acelulares |
| Ácido hialurónico |
GAG (no sulfatado) |
Dermis, cartílago, líquido sinovial, cordón umbilical |
Hidratación (1g retiene 6L agua), señalización (según PM), viscoelasticidad |
Juvederm®, Restylane®, Hyaloss® (scaffold), Hyaff® |
| Condroitín sulfato |
GAG (sulfatado) |
Cartílago, hueso, piel |
Resistencia compresiva, hidratación, señalización |
Condroitín sulfato oral (controvertido) [D] |
| Heparán sulfato |
GAG (sulfatado) |
Membrana basal, superficie celular |
Reservorio de GFs (FGF, VEGF, HGF), co-receptor |
Heparina (análogo terapéutico) |
| Tenascina-C |
Glicoproteína |
Tejidos embrionarios, heridas, tumores |
Migración celular, remodelación, re-expresada en reparación |
Biomarcador de reparación activa |
Ácido hialurónico según peso molecular — Señalización dual
| Peso molecular |
Denominación |
Efecto biológico |
Aplicación clínica |
| >1000 kDa |
Alto PM (HMW-HA) |
Anti-inflamatorio, anti-angiogénico, inmunosupresor, hidratación |
Viscosupplementación articular, filler dérmico |
| 100-1000 kDa |
Medio PM |
Transición, efectos mixtos |
Biorevitalización (Profhilo® ~64kDa H-HA + 32kDa L-HA) |
| <100 kDa |
Bajo PM (LMW-HA) |
Pro-inflamatorio (TLR2/4), pro-angiogénico, quimiotáctico |
Fragmentos de degradación → señal de daño (DAMP) |
| <10 kDa (oligosacáridos) |
Fragmentos HA |
Fuertemente pro-inflamatorio y pro-angiogénico |
No uso clínico directo; producto de hialuronidasa |
Los fragmentos de HA (LMW) generados por hialuronidasa activan TLR2/4 → NF-κB → inflamación.
Relevancia: la degradación de fillers por hialuronidasa genera transitoriamente una respuesta inflamatoria local [C] (Kavasi 2017).
Scaffolds naturales vs sintéticos
| Característica |
Scaffolds naturales |
Scaffolds sintéticos |
| Ejemplos |
Colágeno, fibrina, HA, seda, quitosano, matrices acelulares (ADM) |
PLA, PGA, PLGA, PCL, PEG, hidroxiapatita |
| Biocompatibilidad |
Excelente (reconocimiento celular nativo) |
Variable (puede requerir funcionalización) |
| Degradación |
Enzimática (colagenasa, hialuronidasa) |
Hidrólisis (controlable por composición) |
| Señalización |
Intrínseca (secuencias RGD, dominios de unión a GFs) |
Requiere adición de péptidos/GFs |
| Reproducibilidad |
Baja (variabilidad lote a lote) |
Alta (síntesis controlada) |
| Riesgo inmunogénico |
Bajo-moderado (origen xenogénico posible) |
Mínimo |
| Porosidad |
Variable, difícil de controlar |
Controlable (electrospinning, 3D printing) |
Matrices acelulares de uso clínico en estética/regenerativa
| Producto |
Origen |
Procesamiento |
Indicación principal |
Evidencia |
| AlloDerm® |
Dermis humana cadavérica |
Descelularización, liofilización |
Reconstrucción mamaria, cicatrices |
[A] |
| Integra® |
Colágeno bovino + GAG + silicona |
Bicapa sintética-biológica |
Quemaduras, pérdida sustancia |
[A] |
| MatriDerm® |
Colágeno bovino I/III/V + elastina |
Matriz no cross-linked |
Heridas complejas, cicatrices |
[B] |
| SurgiMend® |
Dermis fetal bovina |
Descelularización suave |
Reconstrucción pared abdominal/mama |
[B] |
| Cymetra® |
Dermis humana micronizada |
Inyectable |
Aumento de tejidos blandos |
[B] |
§5 Señalización Paracrina y Secretoma
El paradigma paracrino de las MSCs
==Las MSCs ejercen su efecto terapéutico principal NO por diferenciación e injerto tisular,
sino por secreción de factores solubles y vesículas extracelulares (efecto paracrino).==
[B] (Gnecchi 2005, Caplan 2017, Galipeau 2018)
Evidencia clave: medio condicionado (CM) de MSCs replica ~80% de los efectos terapéuticos de las MSCs trasplantadas en modelos de isquemia miocárdica [B] (Timmers 2007), heridas cutáneas [B] (Chen 2008) y fibrosis pulmonar [B] (Hansmann 2012).
Composición del secretoma
SECRETOMA DE MSCs
|
+---------------+---------------+
| |
FRACCION SOLUBLE VESICULAS EXTRACELULARES
| |
+------+------+ +---------+---------+
| | | | |
Citoquinas GFs Quimioquinas EXOSOMAS MICROVESICULAS
(IL-10, (HGF, (SDF-1, (30-150nm) (150-1000nm)
IL-6, VEGF, MCP-1, Endosomal Brotacion
TGF-b) IGF, CXCL5) CD9/63/81+ membrana
FGF) miRNA, mRNA, plasmatica
proteinas
Componentes del secretoma y funciones
| Componente |
Subtipos relevantes |
Función principal |
Nivel de evidencia |
| IL-10 |
– |
Anti-inflamatorio, polarización M2, supresión Th1 |
[B] (Bernardo 2013) |
| IL-6 |
– |
Dual: pro-inflamatorio agudo / regenerativo crónico |
[B] |
| TSG-6 |
– |
Anti-inflamatorio potente, inhibe migración neutrófilos |
[B] (Prockop 2012) |
| PGE2 |
– |
Inmunomodulación, polarización M2, vasodilatación |
[B] |
| HGF |
– |
Anti-fibrótico, hepatoprotector, motogénico |
[B] (Caplan 2017) |
| IDO (indolamina 2,3-dioxigenasa) |
– |
Depleción triptófano → supresión proliferación T |
[B] |
| VEGF |
A, C |
Angiogénesis, supervivencia endotelial |
[B] |
| SDF-1 (CXCL12) |
α |
Homing de progenitores CD34⁺, reclutamiento MSCs |
[B] |
| Galectina-1 |
– |
Supresión células T, inducción apoptosis linfocitaria |
[C] (Gieseke 2013) |
| Exosomas |
CD9⁺/CD63⁺/CD81⁺ |
Transferencia horizontal de miRNA reguladores, reprogramación celular |
[B] (Phinney 2015) |
miRNAs exosomales clave en regeneración
| miRNA |
Función |
Diana molecular |
Aplicación potencial |
| miR-21 |
Anti-apoptótico, pro-angiogénico |
PTEN, PDCD4 |
Cicatrización, cardioprotección |
| miR-146a |
Anti-inflamatorio |
IRAK1, TRAF6 → NF-κB↓ |
Reducción inflamación crónica |
| miR-126 |
Pro-angiogénico |
SPRED1, PIK3R2 |
Revascularización, supervivencia injerto graso |
| miR-29 |
Anti-fibrótico |
Colágeno I/III, fibrilina |
Prevención fibrosis/cicatriz hipertrófica |
| miR-155 |
Pro-inflamatorio (M1) |
SOCS1, SHIP1 |
Inhibir para favorecer M2 |
| miR-223 |
Anti-inflamatorio (M2) |
NLRP3, Pknox1 |
Resolución inflamación |
Polarización macrófagos M1→M2 por MSCs — Mecanismo
MSCs detectan señales inflamatorias (TNF-a, IFN-g, LPS)
|
v
MSCs se "activan" (priming/licensing)
|
+-----------+-----------+
| | |
v v v
Secretan Secretan Secretan
PGE2 TSG-6 IL-10
| | |
v v v
COX-2 Inhibe Suprime
via EP2/4 migracion Th1/Th17
| neutrofilos |
v | v
Macrofago M1 ----+----> Macrofago M2
(CD80+, TNF-a) (CD163+, IL-10)
| |
v v
INFLAMACION RESOLUCION
DESTRUCCION REPARACION
REGENERACION
Las MSCs requieren priming inflamatorio (IFN-γ + TNF-α) para activar su capacidad inmunomoduladora. Sin priming, su efecto es mínimo [B] (Krampera 2006).
Implicaciones clínicas del paradigma paracrino
| Concepto |
Implicación práctica |
| MSCs no necesitan injertarse para funcionar |
El efecto terapéutico es transitorio → pueden requerirse sesiones repetidas |
| Medio condicionado puede ser suficiente |
Base del uso de exosomas aislados como terapia cell-free [C] |
| El microambiente receptor modula el efecto |
Un tejido crónicamente inflamado puede no responder igual que uno agudo |
| MSCs de diferentes fuentes secretan diferente |
ASCs (grasa) > BM-MSCs (médula) en secreción de VEGF y HGF [B] |
| La edad del donante afecta el secretoma |
Donantes jóvenes: mayor potencia paracrina [B] (Choudhery 2014) |
§6 Mecanobiología y Mecanotransducción
Principio fundamental
Las células detectan y responden a fuerzas mecánicas (tensión, compresión, cizallamiento, rigidez del sustrato)
convirtiéndolas en señales bioquímicas intracelulares (mecanotransducción).
Leyes clásicas de adaptación mecánica
| Ley |
Tejido |
Enunciado |
Aplicación clínica |
| Ley de Wolff (1892) |
Hueso |
El hueso se remodela en respuesta a las cargas mecánicas aplicadas |
Osteogénesis por distracción, implantes con carga temprana |
| Ley de Davis (1867) |
Tejido blando |
Los tejidos blandos se remodelan según las fuerzas mecánicas impuestas |
Movilización temprana post-cirugía, taping, presoterapia en cicatrices |
| Ley de Laplace |
Vasos/cavidades |
Tensión pared = (Presión × Radio) / (2 × Grosor pared) |
Aneurismas, varices, insuflación CO₂ en carboxiterapia |
Mecanosensores celulares
| Mecanosensor |
Tipo |
Mecanismo |
Relevancia clínica |
| Integrinas |
Receptor transmembrana |
Unión MEC (RGD) → activación FAK → cascadas MAPK, PI3K/Akt |
Base de la adhesión celular a scaffolds; mecanotransducción primaria |
| Canales Piezo (Piezo1, Piezo2) |
Canal iónico mecanosensible |
Deformación membrana → entrada Ca²⁺ → señalización |
Piezo1: condrocitos responden a compresión; eritrocitos detectan cizallamiento [C] (Coste 2010) |
| YAP/TAZ |
Co-activadores transcripcionales |
Rigidez sustrato → YAP nuclear → proliferación + diferenciación osteogénica. Sustrato blando → YAP citoplásmico → quiescencia/adipogénesis |
==Determinante en diferenciación MSC: sustrato rígido = hueso, sustrato blando = grasa== [B] (Dupont 2011) |
| Cilios primarios |
Organelo sensorial |
Detectan flujo de líquido (osteocitos en canalículos óseos) |
Osteocitos como mecanosensores maestros del hueso |
| Cadherinas |
Uniones célula-célula |
Tensión intercelular → β-catenina → Wnt pathway |
Relevante en epitelización y barrera cutánea |
| Glicocaliz endotelial |
Capa de GAGs en superficie endotelial |
Detecta shear stress → eNOS → NO → vasodilatación |
Carboxiterapia: CO₂ aumenta shear stress local |
Rigidez del sustrato y destino celular MSC
| Rigidez del sustrato (kPa) |
Tejido equivalente |
Diferenciación MSC favorecida |
Vía de señalización |
| 0.1–1 kPa |
Cerebro, médula ósea |
Neurogénica |
YAP citoplásmico, Rho bajo |
| 8–17 kPa |
Músculo |
Miogénica |
YAP parcialmente nuclear |
| 25–40 kPa |
Cartílago, hueso trabecular |
Condrogénica / Osteogénica |
YAP nuclear, Rho alto, ROCK activo |
| >40 kPa |
Hueso cortical |
Osteogénica |
FAK → MAPK/ERK, Runx2⁺ |
Ref: Engler 2006 [B] — estudio seminal en matrices de poliacrilamida con MSCs.
Estímulos mecánicos y aplicaciones clínicas
| Estímulo mecánico |
Respuesta celular/tisular |
Aplicación clínica |
Evidencia |
| Microagujas (microneedling) |
Microlesión controlada → cascada hemostasia + inflamación → neocolagénesis (tipo I y III) |
Rejuvenecimiento, cicatrices atróficas, estrías, alopecia (con PRP) |
[A] (Aust 2008, Alster 2009) |
| Ondas de choque (ESWT) |
Mecanotransducción → liberación local de VEGF, eNOS, PCNA; neovascularización; disgregación calcificaciones |
Celulitis (radiales), tendinopatías, ED, cicatrices |
[B] (Moya 2018, Knobloch 2008) |
| Presión negativa (VAC) |
Macrodeformación + microdeformación → proliferación, angiogénesis, reducción edema |
Heridas complejas, post-quirúrgico |
[A] |
| Tracción tisular (distracción) |
Histiogénesis por tracción: hueso, piel, nervio se regeneran bajo tensión controlada |
Osteogénesis por distracción (Ilizarov), expansores tisulares |
[A] |
| Ultrasonido terapéutico |
Microstreaming → estimulación fibroblástica, cavitación → lisis adipocitos (HIFU) |
HIFU facial, HIFU corporal, consolidación fracturas (LIPUS) |
[B] |
| Radiofrecuencia |
Calentamiento colágeno (60-65°C) → contracción + desnaturalización parcial → neocolagénesis remodelativa |
Tensado cutáneo, remodelación corporal |
[B] (Zelickson 2004) |
| Presoterapia/compresión |
Reducción edema, mejora retorno venoso, alineación fibras colágeno |
Cicatrices hipertróficas, post-liposucción |
[A] (prendas compresivas) |
§7 Hipoxia y Angiogénesis
Vía HIF-1α — Sensor maestro de oxígeno
NORMOXIA (pO2 normal) HIPOXIA (pO2 < 5%)
| |
v v
PHD activa PHD inactiva
(prolil hidroxilasa) (requiere O2 como sustrato)
| |
v v
HIF-1a hidroxilado HIF-1a estable (no degradado)
| |
v v
VHL reconoce HIF-1a transloca al nucleo
HIF-1a-OH |
| v
v HIF-1a + HIF-1b (ARNT)
Ubiquitinacion |
| v
v Union a HRE (Hypoxia
DEGRADACION Response Elements)
proteasomal |
v
TRANSCRIPCION de genes diana:
- VEGF-A (angiogenesis)
- SDF-1 (homing stem cells)
- EPO (eritropoyesis)
- GLUT1 (metabolismo glucosa)
- MMP-2/9 (remodelacion MEC)
- Angiopoyetina-2
Factores pro-angiogénicos vs anti-angiogénicos
| Pro-angiogénicos |
Fuente principal |
Mecanismo |
Anti-angiogénicos |
Fuente |
Mecanismo |
| VEGF-A |
Células hipóxicas, plaquetas, macrófagos |
Receptor VEGFR-2 (KDR) → proliferación endotelial |
Trombospondina-1 (TSP-1) |
Plaquetas, fibroblastos |
CD36 → apoptosis endotelial |
| FGF-2 |
Macrófagos, MEC (almacenado en heparán sulfato) |
FGFR1 → proliferación y migración endotelial |
Endostatina |
Colágeno XVIII (proteólisis) |
Inhibe migración endotelial, bloquea VEGFR-2 |
| Angiopoyetina-1 (Ang-1) |
Pericitos, células murales |
Tie-2 → maduración y estabilización vascular |
Angiopoyetina-2 (Ang-2) |
Células endoteliales |
Tie-2 antagonista → desestabilización (con VEGF = angiogénesis; sin VEGF = regresión) |
| PDGF-BB |
Plaquetas, células endoteliales |
Reclutamiento pericitos → estabilización vaso |
Angiostatina |
Plasminógeno (proteólisis) |
Inhibe proliferación endotelial |
| HIF-1α |
Todas las células nucleadas |
Factor transcripcional maestro |
PEDF |
RPE, adipocitos |
Anti-angiogénico potente en retina y grasa |
| SDF-1 |
Estroma, osteoblastos |
Reclutamiento progenitores endoteliales (EPCs) |
TIMPs (1,2,3) |
Fibroblastos |
Inhiben MMPs → impiden migración endotelial |
| Eritropoyetina (EPO) |
Riñón (hipoxia) |
Pro-angiogénico y citoprotector |
Interferón-α/β |
Leucocitos |
Supresión directa de angiogénesis |
Hipoxia controlada como estímulo regenerativo — Aplicaciones clínicas
| Técnica/procedimiento |
Mecanismo hipóxico |
Efecto regenerativo |
Evidencia |
| Inyección de PRP |
Coágulo plaquetario = consumo local O₂ + barrera difusión → hipoxia transitoria |
HIF-1α↑ → VEGF↑ → neovascularización + reclutamiento MSCs |
[B] |
| Injerto graso (lipofilling) |
Isquemia central del injerto → gradiente hipóxico |
Supervivencia del injerto depende de revascularización en primeras 48-72h. Hipoxia moderada estimula angiogénesis; excesiva = necrosis |
[B] (Yoshimura 2009) |
| Carboxiterapia (CO₂) |
CO₂ subcutáneo → efecto Bohr (↓afinidad Hb-O₂) → liberación O₂ tisular + vasodilatación directa |
Oxigenación paradójica, neovascularización, lipólisis (alta presión), mejora microcirculación |
[B] (Brandi 2001, Ferreira 2008) |
| Plasma rico en fibrina (PRF) |
Membrana de fibrina = barrera parcial al O₂ → microambiente hipóxico protegido |
Liberación sostenida GFs bajo hipoxia controlada → angiogénesis + regeneración |
[B] |
| Terapia fotodinámica |
Consumo O₂ por fotosensibilizador → hipoxia local transitoria |
Respuesta regenerativa post-PDT, remodelación colágeno |
[C] |
| HBOT (oxígeno hiperbárico) |
Hiperóxia → producción ROS controlada → HIF-1α paradójico (rebound) + VEGF↑ post-sesión |
Hiperóxia-hipoxia relativa oscilante estimula angiogénesis y movilización EPCs |
[B] (Thom 2006) |
Efecto Bohr — Base de la carboxiterapia
CO2 inyectado subcutaneo
|
v
pH local desciende (acidosis)
|
v
Curva disociacion Hb se desplaza a la DERECHA
|
v
Hemoglobina libera O2 con mayor facilidad
|
v
+---------------------------+
| pO2 tisular local AUMENTA |
| (oxigenacion paradojica) |
+---------------------------+
|
+----+----+
| |
v v
Vasodilatacion Neoangiogenesis
(NO, PGI2) (VEGF, FGF-2)
| |
v v
Mejora Remodelacion
microcirculacion dermica
Dosis carboxiterapia facial: 50-150 mL CO₂ por sesión. Corporal (celulitis): 200-500 mL por zona. Flujo: 50-80 mL/min facial, 80-150 mL/min corporal. [D]
§8 Inflamación Controlada — El Paradigma Regenerativo
Concepto clave
==La inflamación aguda controlada es NECESARIA para la regeneración.
La inflamación crónica no resuelta IMPIDE la regeneración y promueve fibrosis.==
La diferencia entre regeneración y fibrosis no es "inflamación sí/no" sino resolución activa vs cronificación.
| SPM |
Precursor |
Enzima |
Función principal |
Evidencia |
| Resolvina E1 (RvE1) |
EPA (ω-3) |
5-LOX, COX-2 (acetilada por AAS) |
Inhibe infiltración neutrófilos, promueve eferocitosis |
[B] (Serhan 2000) |
| Resolvina D1 (RvD1) |
DHA (ω-3) |
15-LOX, 5-LOX |
Anti-inflamatorio, reduce dolor, promueve reparación neuronal |
[B] (Serhan 2002) |
| Protectina D1 (PD1/NPD1) |
DHA (ω-3) |
15-LOX |
Neuroprotección, anti-inflamatorio, anti-apoptótico |
[B] (Serhan 2004) |
| Maresina 1 (MaR1) |
DHA (ω-3) |
12-LOX (en macrófagos) |
Potente regenerativo, reclutamiento MSCs, polarización M2 |
[B] (Serhan 2012) |
| Lipoxina A4 (LXA4) |
Ácido araquidónico (ω-6) |
15-LOX / 5-LOX |
"Señal de freno" de inflamación aguda, promueve eferocitosis |
[B] (Serhan 1984) |
| Anexina A1 |
Proteína endógena |
Inducida por glucocorticoides |
Inhibe migración neutrófilos, promueve eferocitosis |
[B] |
Algoritmo de resolución inflamatoria
LESION TISULAR
|
v
FASE INFLAMATORIA AGUDA (horas-dias)
- Neutrofilos (pico 24-48h)
- Macrofagos M1
- IL-1b, TNF-a, IL-6, ROS
|
v
SWITCH DE CLASE LIPIDICA (dia 2-4)
- Prostaglandinas/Leucotrienos
- se reemplazan por
- Lipoxinas + Resolvinas + Maresinas
|
v
RESOLUCION ACTIVA (dia 3-7) FALLO DE RESOLUCION
- Eferocitosis (macrofagos |
fagocitan neutrofilos apoptoticos) v
- Macrofagos M1 ----> M2 INFLAMACION CRONICA
- IL-10, TGF-b3 - Neutrofilos persistentes
- SPMs (RvD1, MaR1, PD1) - M1 persistentes
| - TNF-a, IL-1b cronicos
v - MMPs excesivas
REGENERACION / REPARACION |
ORDENADA v
FIBROSIS / CICATRIZ
PATOLOGICA
(queloides, contracturas)
AINEs y regeneración — La controversia clínica
| Evidencia |
Hallazgo |
Implicación clínica |
| [B] Wheatley 2006 |
Ibuprofeno retrasa consolidación fracturas en modelo murino |
Evitar AINEs 48-72h post-fractura |
| [B] Dimmen 2009 |
Indometacina reduce formación ósea heterotópica pero también retrasa healing tendinoso |
Beneficio en osificación heterotópica, perjuicio en tendón |
| [B] Marsolais 2007 |
AINEs reducen fase inflamatoria temprana → menor reclutamiento de macrófagos reparadores |
Menor transición M1→M2 = menor señal regenerativa |
| [B] Schoenfeld 2012 |
Metaanálisis: AINEs NO aumentan significativamente no-unión ósea en fracturas diafisarias |
Efecto puede ser dosis y duración-dependiente |
| [B] Pountos 2012 |
COX-2 selectivos (celecoxib) menos perjudiciales que no selectivos para hueso |
Si analgesia necesaria, preferir COX-2 selectivo (menor impacto) |
| [C] Roh 2014 |
AAS a dosis baja puede promover resolución (genera resolvinas vía COX-2 acetilada) |
AAS 100mg puede ser pro-resolutivo (aspirin-triggered lipoxins/resolvins) |
Recomendación práctica para procedimientos regenerativos
PROCEDIMIENTO REGENERATIVO (PRP, proloterapia, etc.)
|
v
+----------+----------+
| |
ANALGESIA ANALGESIA
NECESARIA? NO NECESARIA
| |
v v
EVITAR AINEs Solo hielo local
48-72h minimo (crioterapia breve
| <15min, intermitente)
v
ALTERNATIVAS:
- Paracetamol (NO inhibe COX)
- Tramadol (opioide debil)
- Metamizol (mecanismo diferente a AINEs clasicos)
- Crioterapia breve intermitente
- Codeine si dolor severo
POST-PRP/PRF: evitar AINEs mínimo 48h (idealmente 5-7 días). Paracetamol 1g/6-8h como primera línea analgésica. [D] (consenso expertos, ISPRES 2019)
Inflammaging — Inflamación crónica de bajo grado
| Parámetro |
Descripción |
Relevancia regenerativa |
| Definición |
Estado inflamatorio crónico, estéril, de bajo grado, asociado al envejecimiento |
Franceschi 2000 [B] |
| Biomarcadores |
IL-6↑, TNF-α↑, CRP↑, IL-1β↑ (elevación leve pero sostenida) |
Predictor de respuesta subóptima a tratamientos regenerativos |
| Mecanismos |
Senescencia celular (SASP), disfunción mitocondrial, microbiota alterada, obesidad visceral |
Células senescentes secretan factores pro-inflamatorios crónicos |
| Consecuencias |
Sarcopenia, osteoporosis, aterosclerosis, neurodegeneración, peor cicatrización |
Pacientes con inflammaging responden peor a PRP y stem cells |
| Estrategias |
Ejercicio, restricción calórica, ω-3, polifenoles (resveratrol), senolíticos (dasatinib+quercetina) |
[C] (senolíticos en fase clínica temprana, Unity Biotechnology 2020) |
Inflamación pro-regenerativa vs crónica — Comparación
| Característica |
Inflamación pro-regenerativa |
Inflamación crónica (anti-regenerativa) |
| Duración |
3-7 días, autolimitada |
Semanas-meses-años |
| Células predominantes |
Neutrófilos (temprano) → Macrófagos M2 (tardío) |
Macrófagos M1 persistentes, linfocitos T |
| Mediadores |
IL-6 transitorio, TNF-α temprano, SPMs tardíos |
TNF-α crónico, IL-1β, ROS excesivos |
| MEC |
Remodelación ordenada (MMP/TIMP equilibrio) |
Degradación excesiva (MMP >> TIMP) |
| Eferocitosis |
Activa y eficiente |
Deficiente → necrosis secundaria |
| Resultado |
Resolución → regeneración/reparación |
Daño tisular progresivo → fibrosis |
| Ejemplo clínico |
Post-PRP día 1-5 (dolor, edema transitorio) |
Artrosis, tendinopatía crónica, úlcera venosa |
§9 Seguridad, Consideraciones y Contraindicaciones Generales
Contraindicaciones absolutas para procedimientos regenerativos
| Contraindicación |
Procedimientos afectados |
Razonamiento |
Evidencia |
| Neoplasia activa / cáncer en tratamiento |
TODOS (PRP, MSCs, exosomas, GFs) |
GFs y señalización paracrina pueden estimular proliferación tumoral |
[A] (ISCT 2019) |
| Infección activa en zona de tratamiento |
TODOS |
Riesgo de diseminación, biofilm, sepsis |
[A] |
| Septicemia / bacteriemia |
TODOS |
Contraindicación absoluta inyecciones percutáneas |
[A] |
| Trombocitopenia severa (<50.000/μL) |
PRP, PRF, PRGF |
Imposible obtener concentrado plaquetario terapéutico |
[A] |
| Trastorno plaquetario funcional (Glanzmann, Bernard-Soulier) |
PRP, PRF |
Plaquetas disfuncionales = GFs deficientes |
[A] |
| Embarazo (precaución, no datos) |
TODOS |
Ausencia de datos de seguridad |
[D] |
| Tratamiento con anticoagulantes no suspendible |
Infiltraciones profundas |
Riesgo hemorrágico → hematoma → infección |
[A] |
Contraindicaciones relativas
| Contraindicación relativa |
Manejo |
Notas |
| Antecedente de cáncer en remisión |
Esperar mínimo 5 años libre de enfermedad; consentimiento informado específico; evitar infiltración en zona del tumor previo |
Consultar oncólogo. Excepción: PRP tópico en heridas (sin infiltración) |
| Terapia anticoagulante |
Ver tabla de manejo abajo |
Valorar riesgo trombótico vs hemorrágico con cardiólogo/hematólogo |
| Inmunosupresión |
Valorar riesgo infeccioso |
Dosis bajas de corticoides (<10mg prednisona) generalmente aceptables |
| Diabetes mal controlada (HbA1c >8%) |
Optimizar control glucémico previo |
HbA1c >8% = peor cicatrización, peor respuesta a PRP [B] |
| Tabaquismo activo |
Cese ≥2 semanas pre/post procedimiento ideal |
Nicotina = vasoconstricción → peor angiogénesis → peor resultado [B] |
| Uso crónico de corticoides |
Valorar reducción previa si posible |
Corticoides inhiben proliferación fibroblástica y angiogénesis |
| Hemoglobinopatías |
Precaución con PRP: composición puede variar |
Anemia de células falciformes: mayor riesgo complicaciones |
| Alergia a anestésicos locales |
Usar técnica sin anestesia o con alternativa |
Alergia verdadera a amidas es extremadamente rara |
Manejo de anticoagulantes y antiagregantes
| Medicamento |
Mecanismo |
Suspender antes |
Reanudar después |
Riesgo sin suspender |
Evidencia |
| AAS 100 mg |
COX-1 irreversible |
NO suspender para PRP superficial. Suspender 7d para infiltraciones profundas |
Inmediatamente post-procedimiento |
Bajo (para superficial) |
[D] (ASRA 2018) |
| Clopidogrel |
Inhibidor P2Y12 irreversible |
7 días antes |
24h después |
Moderado-alto |
[A] (ASRA 2018) |
| Prasugrel |
Inhibidor P2Y12 irreversible |
7-10 días antes |
24h después |
Alto |
[A] |
| Ticagrelor |
Inhibidor P2Y12 reversible |
5 días antes |
24h después |
Moderado |
[A] |
| Acenocumarol/Warfarina |
Anti-vitamina K |
3-5 días antes (INR <1.5) |
Mismo día post-procedimiento |
Alto (hematoma) |
[A] |
| Dabigatrán |
Anti-trombina directa |
48h antes (72h si ClCr <50) |
24h después |
Moderado |
[A] (ASRA 2018) |
| Rivaroxabán |
Anti-Xa directo |
24-48h antes |
24h después |
Moderado |
[A] |
| Apixabán |
Anti-Xa directo |
48h antes |
24h después |
Moderado |
[A] |
| Enoxaparina (profiláctica) |
Anti-Xa indirecto |
12h antes |
6-8h después |
Bajo |
[A] |
| Enoxaparina (terapéutica) |
Anti-Xa indirecto |
24h antes |
24h después |
Moderado |
[A] |
| Heparina no fraccionada |
Anti-trombina |
4-6h antes (verificar TTPa) |
1-2h después |
Variable |
[A] |
REGLA PRÁCTICA: Siempre consultar con el médico prescriptor antes de suspender cualquier anticoagulante/antiagregante. El riesgo trombótico (ictus, IAM, TEP) SIEMPRE supera al riesgo hemorrágico del procedimiento estético. [A]
Timing de AINEs en relación a procedimientos regenerativos
| Momento |
AINE |
Procedimiento |
Recomendación |
Justificación |
| Pre-procedimiento |
Cualquier AINE |
PRP, PRF, proloterapia |
Suspender 48-72h antes |
AINEs alteran función plaquetaria (especialmente desgranulación). Ibuprofeno: efecto reversible 24-48h. AAS: irreversible 7-10d |
| Post-procedimiento |
Cualquier AINE |
PRP, PRF, proloterapia |
Evitar 5-7 días post |
Inhiben COX → bloquean cascada inflamatoria necesaria para regeneración |
| Pre-procedimiento |
Cualquier AINE |
Microneedling |
Suspender 24h antes |
Menor impacto que en PRP pero altera fase inflamatoria inicial |
| Post-procedimiento |
Cualquier AINE |
Microneedling |
Evitar 48h post |
Permitir fase inflamatoria inicial del microneedling |
| Pre-procedimiento |
AAS 100mg crónico |
PRP/PRF |
Mantener si riesgo CV alto |
Efecto sobre función plaquetaria vs riesgo trombótico: prevalece seguridad CV |
| Post-procedimiento |
Paracetamol |
Todos |
Primera línea analgésica post-regenerativo |
No inhibe COX periféricamente de forma significativa |
Riesgo de infección — Prevención
| Medida |
Procedimiento |
Detalle |
| Asepsia zona de infiltración |
Todos |
Clorhexidina 2% alcohólica > povidona yodada (mayor espectro y duración). Dejar secar ≥30s |
| Preparación PRP en circuito cerrado |
PRP/PRF |
Kits cerrados certificados (CE/FDA). Nunca preparar PRP en tubo abierto |
| Control de esterilidad |
Centrifugación |
Centrífuga dentro de zona limpia, no en zona contaminada |
| Antibiótico profiláctico |
No rutinario |
No indicado de rutina para PRP/PRF intradérmico [D]. Considerar si infiltración articular o periarticular profunda en paciente inmunodeprimido |
| Vigilancia post-procedimiento |
Todos |
Signos de alerta: eritema progresivo, fiebre >38°C, dolor creciente 48h post, exudado purulento |
| Biofilm y filler previo |
Inyección de PRP/PRF en zona con filler HA |
Riesgo teórico de reactivación de biofilm en filler previo [C]. Valorar anamnesis de complicaciones previas |
Riesgo tumoral — Consideraciones con factores de crecimiento
| Preocupación |
Evidencia actual |
Conclusión práctica |
| ¿PRP promueve tumores? |
No hay evidencia de aumento de incidencia tumoral con PRP autólogo en >20 años de uso [B] (Lacci 2010) |
Seguro en pacientes sin neoplasia activa |
| ¿VEGF exógeno y tumores? |
VEGF es pro-angiogénico tumoral, pero concentraciones en PRP son fisiológicas (no farmacológicas) |
Efecto local y transitorio; no equivale a terapia anti-VEGF inversa |
| ¿MSCs y tumores? |
Datos contradictorios in vitro; in vivo no se ha demostrado aumento de incidencia [B] (Lalu 2012, metaanálisis) |
Precaución en antecedentes oncológicos recientes (<5 años) |
| ¿Exosomas y tumores? |
Exosomas tumorales ≠ exosomas de MSC sanas. Los exosomas terapéuticos provienen de MSC cultivadas en condiciones controladas |
Uso de exosomas requiere trazabilidad y control de calidad GMP [C] |
Lista de verificación pre-procedimiento regenerativo
- [ ] Historia oncológica completa (neoplasias activas o previas)
- [ ] Lista actualizada de medicamentos (AINEs, anticoagulantes, inmunosupresores)
- [ ] Hemograma reciente (plaquetas >100.000/μL para PRP; >150.000/μL ideal)
- [ ] HbA1c si diabético (<7.5% ideal, <8% aceptable)
- [ ] Estado de tabaquismo (cese ≥2 semanas recomendado)
- [ ] Infecciones activas descartadas (zona local y sistémica)
- [ ] Consentimiento informado específico firmado
- [ ] Verificar suspensión de AINEs (48-72h pre) y anticoagulantes (según tabla)
- [ ] Alergias documentadas (anestésicos, clorhexidina, látex)
- [ ] Plan analgésico post-procedimiento (paracetamol, NO AINEs)
- [ ] Instrucciones post-procedimiento entregadas por escrito
Reacciones adversas frecuentes y manejo
| Reacción |
Frecuencia |
Tiempo aparición |
Manejo |
| Dolor en punto de inyección |
60-80% |
Inmediato – 48h |
Paracetamol 1g/6-8h. Frío local intermitente (10min on/off). NO AINEs |
| Equimosis |
30-50% |
Inmediato – 24h |
Arnica tópica/oral (evidencia débil [D]). Resolución espontánea 7-14d |
| Edema localizado |
40-60% |
0-48h |
Frío local, elevación. Resolución espontánea 3-5d |
| Eritema |
20-40% |
0-24h |
Autolimitado. Si progresivo >48h: descartar infección |
| Cefalea (tras inyección facial/capilar) |
10-20% |
0-24h |
Paracetamol. Autolimitada |
| Infección |
<0.5% |
48h-7d |
ATB empírico (amoxicilina-clavulánico 875/125 mg/8h o clindamicina si alergia). Drenaje si absceso |
| Reactivación herpes (zona perioral) |
5-10% (en predispuestos) |
2-7d |
Valaciclovir 500mg/12h × 5d. Profilaxis en pacientes con antecedente: valaciclovir 500mg/12h desde 2d antes hasta 5d después |
| Nódulos (PRP/PRF mal inyectado) |
<5% |
1-4 semanas |
Masaje, hialuronidasa (si componente HA), corticoide intralesional si persistente |
Glosario rápido
| Abreviatura |
Significado |
| ASC |
Adipose-derived Stem Cell |
| BM-MSC |
Bone Marrow-derived MSC |
| ECM / MEC |
Extracellular Matrix / Matriz Extracelular |
| EPC |
Endothelial Progenitor Cell |
| GF |
Growth Factor (factor de crecimiento) |
| HBOT |
Hyperbaric Oxygen Therapy |
| HIF-1α |
Hypoxia-Inducible Factor 1-alpha |
| ISCT |
International Society for Cell & Gene Therapy |
| L-PRF |
Leukocyte- and Platelet-Rich Fibrin |
| MMP |
Matrix Metalloproteinase |
| MSC |
Mesenchymal Stem/Stromal Cell |
| PRP |
Platelet-Rich Plasma |
| PRF |
Platelet-Rich Fibrin |
| PRGF |
Plasma Rich in Growth Factors |
| SPM |
Specialized Pro-resolving Mediator |
| SVF |
Stromal Vascular Fraction |
| TIMP |
Tissue Inhibitor of Metalloproteinases |
Última actualización: 2026-03-15