Capítulo 03 — PRF: Plasma Rico en Fibrina
Referencia rápida personal | Medicina Regenerativa — Consulta clínica
§1 Biología del PRF — De PRP a PRF
1.1 Diferencia fundamental con PRP
| Parámetro |
PRP |
PRF |
| Anticoagulante |
Sí (citrato, ACD-A, EDTA) |
No — coagulación natural |
| Matriz |
Líquido o gel activado |
Matriz de fibrina tridimensional autóloga |
| Leucocitos |
Variable (según protocolo) |
Incorporados (L-PRF, A-PRF) |
| Activación |
Trombina/CaCl₂ exógena |
Autoactivación por contacto con sílice/vidrio |
| Liberación de GF |
Burst release (horas) |
Liberación sostenida 10-14 días |
| Manipulación |
Requiere anticoagulante + activador |
Solo centrífuga + tubos sin aditivo |
1.2 Cascada biológica del PRF
- Extracción venosa sin anticoagulante → contacto con sílice/vidrio del tubo
- Activación inmediata de la cascada de coagulación intrínseca
- Fibrinógeno → fibrina (polimerización lenta durante centrifugación)
- Atrapamiento de plaquetas, leucocitos y citoquinas en la malla de fibrina
- Formación de 3 capas: PPP (arriba), coágulo de fibrina + buffy coat (medio), eritrocitos (abajo)
1.3 Factores de crecimiento contenidos en PRF
| Factor |
Función principal |
Pico liberación |
| PDGF-AB |
Quimiotaxis, proliferación fibroblastos |
Día 1-3 |
| TGF-β1 |
Síntesis colágeno, regulación inmune |
Día 1-7 |
| VEGF |
Angiogénesis |
Día 7-14 |
| EGF |
Proliferación epitelial |
Día 3-7 |
| IGF-1 |
Diferenciación celular, síntesis matriz |
Día 1-10 |
| IL-1β, IL-4, IL-6 |
Modulación inflamatoria |
Día 1-3 |
| TNF-α |
Fase inflamatoria temprana |
Día 1 |
1.4 Incorporación leucocitaria y modulación inmune
- Neutrófilos y monocitos atrapados en la matriz de fibrina [B]
- Liberación de MMPs (metaloproteinasas): remodelación tisular controlada
- Macrófagos M2: fenotipo antiinflamatorio → resolución y regeneración [B] (Ghanaati 2018)
- Comunicación plaqueta-leucocito: amplificación paracrina de señales regenerativas
- La presencia leucocitaria diferencia PRF de concentrados plaquetarios puros — no es contaminación, es ventaja biológica
1.5 Cinética de liberación comparada
Concentración
de GF (%)
100 | *
| **
80 | * * PRF ──────────
| * * / \
60 | * * / \
| * * / \
40 | * */ \
| * * \
20 | * / \___PRP \___
| * / ~~~~___ ~~~
0 |__*__/____________~~~________________~~~___
0 1 3 5 7 10 14 21 Días
Interpretación: PRP libera >80% de GF en las primeras 24-72 h (burst release). PRF mantiene liberación sostenida durante 10-14 días, con pico entre días 7-10 [B] (Dohan Ehrenfest 2009; Kobayashi 2016).
§2 Generaciones de PRF — Evolución de Choukroun
2.1 Tabla cronológica de generaciones
| Generación |
Año |
Desarrollador |
RPM |
RCF (g) |
Tiempo |
Tubo |
Producto |
Características principales |
| L-PRF |
2001 |
Choukroun |
2700 |
~400 |
12 min |
Vidrio seco |
Membrana sólida |
Original; alta densidad fibrina |
| A-PRF |
2014 |
Ghanaati |
1500 |
~230 |
14 min |
Vidrio vacío |
Membrana sólida |
Más leucocitos, poros mayores |
| A-PRF+ |
2017 |
Fujioka-Kobayashi |
1300 |
~200 |
8 min |
Vidrio vacío |
Membrana sólida |
↑ TGF-β1, VEGF, PDGF, EGF, IGF-1 |
| i-PRF |
2015 |
Miron/Choukroun |
700 |
~60 |
3 min |
Plástico sin aditivo |
Líquido inyectable |
Sin membrana; uso como biofiller |
| C-PRF |
2019 |
Miron |
— |
2000 |
8 min |
Variable |
Líquido concentrado |
Alta concentración plaquetaria |
| H-PRF |
2021 |
Miron |
— |
700 |
8 min |
Plástico |
Membrana horizontal |
Distribución uniforme de células |
| Alb-PRF |
2022 |
Miron |
— |
700 |
8 min + calor |
Plástico |
Membrana + albúmina |
PPP calentado a 75°C → scaffold estable |
| Bio-PRF |
2023 |
Grupo Miron |
— |
Variable |
Variable |
Plástico |
Membrana/líquido |
Concepto integrador; centrifugación horizontal |
2.2 L-PRF — Protocolo original (Choukroun 2001)
- Extracción: 10 mL sangre venosa sin anticoagulante
- Tubo: vidrio seco recubierto de sílice (activación intrínseca)
- Centrífuga: ángulo fijo, 2700 rpm (~400 g), 12 minutos
- Resultado: membrana de fibrina densa, rica en plaquetas y leucocitos
- Limitación: distribución celular desigual (células empujadas al fondo por alta g)
- Nivel evidencia: [A] — protocolo más estudiado, >2000 publicaciones
2.3 A-PRF — Advanced PRF (Ghanaati 2014)
- Hipótesis: reducir RCF → más células retenidas en la fibrina
- 1500 rpm (~230 g), 14 min
- Resultado: matriz más porosa, mayor infiltración leucocitaria
- Ventaja: ↑ neutrófilos, ↑ monocitos → mejor modulación inmune [B]
- Aplicación principal: cirugía oral, regeneración ósea guiada
2.4 A-PRF+ (Fujioka-Kobayashi 2017)
- Evolución de A-PRF: 1300 rpm (~200 g), 8 min
- Reducción adicional de RCF + tiempo
- Liberación significativamente mayor de TGF-β1, VEGF, PDGF, EGF e IGF-1 vs A-PRF y L-PRF [B]
- Systematic review 2024: mejora estabilidad ósea periimplantaria y torque de inserción [B]
- Aplicación: injertos óseos, preservación alveolar, ROG
2.5 i-PRF — Injectable PRF (Miron 2015/2017)
- Protocolo original 2015: 3300 rpm, 2 min (centrífuga horizontal)
- Protocolo revisado 2017: 700 rpm (~60 g), 3 min
- Tubo: plástico sin recubrimiento (retraso en activación de coagulación)
- Producto: fracción líquida superior → inyectable durante 10-15 min antes de gelificar
- Contiene plaquetas, leucocitos, factores de crecimiento en fase líquida
- Aplicaciones estéticas: rejuvenecimiento facial, alopecia, biofiller [C]
2.6 C-PRF — Concentrated PRF
- RCF 2000 g, 8 min
- Mayor concentración plaquetaria que i-PRF convencional
- Consistencia líquida pero más densa
- Uso: combinación con biomateriales, sticky bone
2.7 Bio-PRF — Concepto integrador
- Filosofía: centrifugación horizontal + protocolos personalizados según indicación
- Centrífuga específica (Duo Quattro, Process for PRF)
- Elimina la variabilidad del ángulo fijo
- Distribución celular más homogénea
- Concepto que engloba todos los protocolos de baja velocidad en centrífuga horizontal
- Permite producir simultáneamente membranas y líquido inyectable
§3 Concepto de Baja Velocidad (LSCC)
3.1 Low Speed Centrifugation Concept (Ghanaati 2017)
Publicación seminal: Ghanaati S et al. Eur J Trauma Emerg Surg 2017 — "Reduction of relative centrifugal forces increases growth factor release within solid PRF-based matrices: a proof of concept of LSCC" [B]
Principio fundamental: A menor fuerza centrífuga relativa (RCF), mayor retención de células y factores de crecimiento en la matriz de fibrina
3.2 RCF vs RPM — Por qué importa la RCF
| Concepto |
Definición |
Importancia clínica |
| RPM |
Revoluciones por minuto |
NO es comparable entre centrífugas |
| RCF (g) |
Fuerza centrífuga relativa |
Comparable y reproducible |
| Fórmula |
RCF = 1.118 × 10⁻⁵ × r × RPM² |
r = radio en cm del rotor |
CRÍTICO: Dos centrífugas a las mismas RPM producen RCF diferentes si tienen radios distintos. Siempre reportar y ajustar por RCF, no por RPM.
Ejemplo práctico:
| Centrífuga |
Radio rotor |
2700 RPM = |
1300 RPM = |
| IntraSpin (r=11 cm) |
11 cm |
~900 g |
~208 g |
| Modelo genérico (r=8 cm) |
8 cm |
~653 g |
~151 g |
| DuoCentrifuge (r=10.5 cm) |
10.5 cm |
~859 g |
~199 g |
3.3 Datos experimentales LSCC
Ghanaati utilizó 3 protocolos con RCF decreciente (n=6 voluntarios sanos):
| Protocolo |
RCF (g) |
Plaquetas |
Leucocitos |
GF liberados |
| I (alta velocidad) |
710 |
Referencia |
Referencia |
Referencia |
| II (media) |
177 |
↑ significativo |
↑ significativo |
↑ |
| III (baja) |
44 |
↑↑ altamente significativo |
↑↑ altamente significativo |
↑↑ |
Conclusión LSCC: la reducción sistemática de RCF aumenta de forma dosis-dependiente la concentración de células y factores de crecimiento en la fibrina [B].
3.4 Impacto del tipo de centrífuga
ÁNGULO FIJO HORIZONTAL
+------------------+ +------------------+
| Tubo inclinado | | Tubo vertical |
| / | | | |
| / PPP | | PPP | |
| / ___ | | _____| |
|/ |PRF| | vs. | |PRF | |
| |___| | | |_____| |
| |RBC| | | |RBC | |
| |___| | | |_____| |
+------------------+ +------------------+
|
Distribución desigual Distribución uniforme
Células en un lado Células en capa horizontal
Requiere > RCF Funciona con < RCF
| Tipo centrífuga |
Ventaja |
Desventaja |
Uso ideal |
| Ángulo fijo |
Económica, disponible |
Distribución celular asimétrica |
L-PRF clásico |
| Horizontal |
Distribución homogénea, menor RCF necesaria |
Más cara, específica |
A-PRF+, i-PRF, Bio-PRF |
3.5 Protocolo AR2T3 (para reporte estandarizado)
Herrera-Vizcaíno propuso el acrónimo AR2T3 para reportar protocolos PRF de forma reproducible:
- A = Ángulo de centrifugación (fijo / horizontal)
- R = Radio del rotor (cm)
- R = RCF (g)
- T = Tiempo de centrifugación
- T = Tipo de tubo (vidrio/plástico, con/sin aditivo)
- T = Temperatura
§4 Preparación Paso a Paso
4.1 Material necesario
| Material |
Especificaciones |
Notas |
| Centrífuga |
Horizontal preferible; ángulo fijo aceptable |
Calibrada, con RCF conocida |
| Tubos |
Vidrio seco sin aditivo (L-PRF, A-PRF) o plástico (i-PRF) |
NO usar tubos con anticoagulante |
| Palomilla/mariposa |
21G (estándar) |
Flujo adecuado sin hemólisis |
| Jeringa |
10 mL (si extracción con jeringa) |
Transferencia rápida a tubo |
| Caja de compresión |
Acero inoxidable o titanio |
Para membranas uniformes |
| Tijeras estériles |
Punta roma |
Separar membrana de coágulo rojo |
| Espátula/pinza |
Estéril |
Manipulación de membrana |
| Cronómetro |
Visible durante procedimiento |
Tiempo crítico: < 90 s hasta centrífuga |
- Identificar vena antecubital → torniquete estándar
- Punción venosa con mariposa 21G
- Llenar tubos de 10 mL secuencialmente
- INMEDIATAMENTE retirar torniquete y colocar tubos en centrífuga
- Tiempo máximo desde extracción hasta centrifugación: 90 segundos [A]
- Si se excede → riesgo de coagulación prematura en tubo → producto inutilizable
ADVERTENCIA: La coagulación comienza al contacto sangre-tubo. NO hay margen para preparar otros materiales después de la extracción. Todo debe estar listo ANTES de la venopunción.
4.3 Protocolos de centrifugación
| PRF tipo |
Tubo |
RPM* |
RCF (g) |
Tiempo |
Producto |
Forma final |
| L-PRF |
Vidrio seco |
2700 |
~400 |
12 min |
Membrana densa |
Sólido |
| A-PRF |
Vidrio vacío |
1500 |
~230 |
14 min |
Membrana porosa |
Sólido |
| A-PRF+ |
Vidrio vacío |
1300 |
~200 |
8 min |
Membrana optimizada |
Sólido |
| i-PRF |
Plástico sin aditivo |
700 |
~60 |
3 min |
Líquido inyectable |
Líquido (10-15 min) |
| C-PRF |
Variable |
— |
2000 |
8 min |
Líquido concentrado |
Líquido |
| H-PRF |
Plástico |
— |
700 |
8 min |
Membrana horizontal |
Sólido |
*RPM son aproximadas y dependen del radio del rotor. Ajustar siempre por RCF.
4.4 Procesamiento post-centrifugación — Membranas
PROCESAMIENTO DE MEMBRANA PRF
==============================
Tubo centrifugado Separación Compresión
+----------+ +----------+ +-----------+
| PPP | | | | _______ |
| (claro) | Cortar | PRF | Caja de | | | |
|----------| --------> | membrana | compresión | | PRF | |
| PRF | con | | --------> | | plana | |
| (amarillo)| tijeras +----------+ | |_______| |
|----------| | Descartar| +-----------+
| RBC | | coágulo |
| (rojo) | | rojo | Grosor: ~1 mm
+----------+ +----------+ Exudado: rico en GF
Pasos:
1. Retirar tubo de centrífuga con cuidado (no agitar)
2. Identificar 3 capas: PPP superior, PRF medio (amarillo-blanquecino), RBC inferior
3. Con pinza, extraer el coágulo de PRF
4. Cortar con tijeras en la unión PRF-RBC (zona roja), conservando 1-2 mm de la capa roja (rica en leucocitos)
5. Colocar en caja de compresión → presión uniforme → membrana de ~1 mm
6. El exudado (líquido exprimido) se recoge → rico en factores de crecimiento, usable como inyectable complementario
4.5 Procesamiento post-centrifugación — i-PRF
- Centrifugar a 700 rpm (~60 g), 3 minutos
- Retirar tubo: se observan 2 capas (NO 3 — no hay tiempo para separar bien los RBC de la fibrina)
- Aspirar con jeringa los 1-2 mL superiores (fracción amarilla líquida)
- Evitar aspirar la capa roja
- Inyectar dentro de los siguientes 10-15 minutos (antes de que gelifique)
- Se puede mezclar con biomateriales (hueso particulado) para formar sticky bone
4.6 Rendimiento por tubo
| PRF tipo |
Volumen sangre |
Rendimiento aprox. |
| L-PRF |
10 mL |
1 membrana (~4-5 cm²) |
| A-PRF+ |
10 mL |
1 membrana (mayor volumen) |
| i-PRF |
10 mL |
1-2 mL de líquido inyectable |
| Exudado (de membrana) |
— |
0.5-1 mL adicional |
Para tratamiento facial completo: Típicamente 4-6 tubos (2-3 membranas + 2-3 tubos i-PRF)
§5 PRF Membranas — Aplicaciones
5.1 Indicaciones principales (originarias de cirugía oral)
| Indicación |
Tipo PRF |
Evidencia |
Protocolo |
| Preservación alveolar |
L-PRF, A-PRF+ |
[A] |
Membrana en alvéolo + cobertura |
| ROG (regeneración ósea guiada) |
A-PRF+ |
[B] |
Membrana sobre injerto particulado |
| Elevación de seno maxilar |
L-PRF + injerto |
[B] |
Membrana tipo Schneiderian + relleno |
| Periimplantitis |
PRF membranas |
[C] (2024) |
Desbridamiento + PRF |
| Úlceras crónicas |
L-PRF |
[B] |
Membranas sobre lecho ulceroso |
| Quemaduras |
L-PRF |
[C] |
Cobertura biológica temporal |
5.2 Sticky bone (hueso pegajoso)
Técnica: mezcla de i-PRF líquido + hueso particulado (xenoinjerto o aloplástico)
PREPARACIÓN STICKY BONE
========================
i-PRF líquido Hueso particulado Sticky bone
+----------+ +----------+ +----------+
| ~~~~~~~~ | + | o o o o | = | o~o~o~o |
| ~~~~~~~~ | | o o o o | | ~o~o~o~ |
| ~~~~~~~~ | | o o o o | | o~o~o~o |
+----------+ +----------+ +----------+
1-2 mL 0.5-1 cc Masa moldeable
Coagula in situ
No migra
Ventajas:
- Partículas de injerto adheridas → no migran del defecto
- Factores de crecimiento in situ
- Fácil manipulación y modelado
- Puede cubrirse con membrana PRF para "sándwich biológico"
5.3 Técnica PRF plug (tapón)
- Indicación: alvéolos post-extracción, defectos óseos circunscritos
- Técnica: enrollar membrana PRF formando un cilindro → insertar en defecto
- Puede combinarse con sticky bone en el interior
5.4 Técnica PRF block (bloque)
- Múltiples membranas apiladas y comprimidas → bloque sólido
- Uso como sustituto de injerto en bloque en defectos verticales/horizontales
- Evidencia limitada como método aislado [C]
§6 i-PRF Injectable — Aplicaciones en Estética
6.1 Fundamento del biofiller autólogo
i-PRF como alternativa natural a fillers sintéticos:
- No proporciona volumen permanente — efecto biológico, no mecánico
- Estimula fibroblastos → neocolagénesis endógena
- Promueve angiogénesis → mejora trófica de la piel
- Libera factores de crecimiento in situ durante 10-14 días
6.2 Evidencia clínica en rejuvenecimiento facial
| Estudio |
Diseño |
n |
Resultado |
Nivel |
| Miron 2024 (10 años i-PRF) |
Revisión narrativa |
— |
Mejora textura, elasticidad, arrugas finas |
[D] |
| Hesaraki 2020 |
Prospectivo, centro único |
30 |
Mejora significativa en elasticidad y arrugas finas tras 3 sesiones |
[C] |
| Sollitto 2025 (SR) |
Systematic review PRP vs PRF periorbital |
14 est. |
PRF: mejora textura/arrugas; PRP: mejor para pigmentación |
[B] |
| Wang 2021 |
Prospectivo |
25 |
i-PRF + microneedling: mejora GAIS significativa |
[C] |
6.3 Protocolo estético — Rejuvenecimiento facial con i-PRF
Preparación:
- 4-6 tubos de 10 mL (plástico sin aditivo)
- Centrifugar: 700 rpm (~60 g), 3 minutos
- Aspirar 1-2 mL por tubo → total 4-8 mL de i-PRF
- Tiempo de trabajo: 10-15 minutos máximo
Técnica de inyección:
| Zona |
Profundidad |
Volumen/punto |
Técnica |
Aguja/Cánula |
| Periorbital (ojeras) |
Subdérmica profunda |
0.05-0.1 mL |
Micropápulas/bolo |
30G aguja |
| Surcos nasogenianos |
Subdérmica |
0.1-0.2 mL |
Retrotracing lineal |
27G cánula |
| Labios |
Submucosa/bermellón |
0.05-0.1 mL |
Micropápulas |
30G aguja |
| Mejillas |
Subdérmica/supraperióstica |
0.1-0.3 mL |
Bolo / abanico |
27G cánula |
| Frente/glabela |
Subdérmica superficial |
0.05 mL |
Micropápulas |
30G aguja |
| Cuero cabelludo |
Subdérmica (3-4 mm) |
0.05-0.1 mL/cm² |
Micropápulas en cuadrícula |
30G aguja |
Protocolo de sesiones:
| Indicación |
Sesiones |
Intervalo |
Mantenimiento |
| Rejuvenecimiento facial |
3-4 sesiones |
3-4 semanas |
Cada 4-6 meses |
| Alopecia (androgenética) |
4-6 sesiones |
2-4 semanas |
Cada 3-4 meses |
| Cicatrices atróficas |
3-4 sesiones |
4-6 semanas |
Según respuesta |
| Periorbital |
3 sesiones |
3-4 semanas |
Cada 4-6 meses |
6.4 i-PRF + Microneedling
Protocolo combinado:
1. Preparar i-PRF (como arriba)
2. Aplicar i-PRF sobre la piel como suero
3. Microneedling con dermapen (profundidad 0.5-1.5 mm según zona)
4. Aplicar más i-PRF sobre la piel tratada
5. Masajear suavemente para facilitar absorción
| Zona |
Profundidad microneedling |
Notas |
| Frente |
0.5-1.0 mm |
Evitar vasos superficiales |
| Mejillas |
1.0-1.5 mm |
Zona más gruesa |
| Periorbital |
0.25-0.5 mm |
Piel fina, precaución |
| Labio superior |
0.5-1.0 mm |
Dolor elevado |
| Cuello |
0.5-1.0 mm |
Piel fina |
| Escote |
0.5 mm |
Riesgo cicatriz queloide |
Evidencia: mejora significativa GAIS (Global Aesthetic Improvement Scale) a 3 meses [C] (Wang 2021)
6.5 i-PRF para alopecia — Comparación con PRP
| Parámetro |
PRP |
i-PRF |
| Preparación |
Anticoagulante + activación |
Solo centrifugación |
| Volumen inyectable |
3-6 mL |
4-8 mL |
| Factores de crecimiento |
Liberación rápida |
Liberación sostenida |
| Matriz de fibrina |
No |
Sí (gelifica in situ) |
| Sesiones |
3-4 cada 4 sem |
4-6 cada 2-4 sem |
| Coste preparación |
Mayor (kits) |
Menor (solo tubos + centrífuga) |
| Evidencia en AGA |
[A] (múltiples MA) |
[C] (series de casos, estudios piloto) |
6.6 EZ Gel PRF (tendencia 2024-2025)
- Protocolo emergente: mezcla de i-PRF + albúmina calentada → gel inyectable
- Se calienta la capa PPP a 60-69°C → desnaturalización parcial de albúmina
- Se mezcla con i-PRF → gel viscoso con mayor volumen y duración
- Vida media del efecto volumétrico: potencialmente 3-6 meses (vs semanas del i-PRF)
- Evidencia: [C] — datos preliminares, no aprobado regulatoriamente en muchos países
- Precaución: temperatura y tiempo de calentamiento críticos → riesgo de desnaturalización excesiva
§7 PRF + Scaffolds y Combinaciones
7.1 PRF + Ácido Hialurónico
| Combinación |
Fundamento |
Protocolo |
Evidencia |
| i-PRF + HA cross-linked |
HA aporta volumen; PRF aporta bioactividad |
Mezcla ex vivo antes de inyectar |
[C] |
| PRF membrana + HA gel |
Scaffold biológico + hidratación |
Aplicación en capas (sandwich) |
[D] |
| Microneedling + HA + i-PRF |
Penetración dérmica potenciada |
HA primero, luego i-PRF con dermapen |
[C] |
Nota: la mezcla directa de i-PRF con HA reticulado es off-label y sin evidencia robusta. La combinación secuencial (HA inyección profunda + i-PRF superficial) tiene mejor fundamento teórico.
7.2 PRF + Lipotransferencia
- Concepto: enriquecer el injerto graso con factores de crecimiento
- Técnica: mezclar i-PRF con grasa procesada (Coleman, nanofat) antes de inyectar
- Fundamento: ↑ angiogénesis → ↑ supervivencia del injerto graso [C]
- Ratio: 1 mL i-PRF por cada 5-10 mL de grasa (sin consenso)
- Estudios en lipofilling facial muestran tendencia a mayor supervivencia [C] (Liao 2020)
7.3 PRF + Biomateriales óseos
| Combinación |
Aplicación |
Ventaja |
| PRF + xenoinjerto (Bio-Oss) |
ROG, elevación seno |
Mejor manipulación + bioactividad |
| PRF + aloplástico (HA/TCP) |
Defectos óseos |
Sticky bone, fácil moldeo |
| PRF + colágeno |
Membranas combinadas |
Barrera + regeneración |
| PRF + PGA/PLGA |
Scaffolds reabsorbibles |
Liberación controlada prolongada |
7.4 Tabla resumen de combinaciones en estética
| Indicación estética |
Combinación óptima |
Nivel evidencia |
| Rejuvenecimiento facial global |
i-PRF inyección + microneedling |
[C] |
| Volumen facial (biofiller) |
EZ Gel PRF (i-PRF + albúmina) |
[C] |
| Lipofilling facial |
Grasa + i-PRF |
[C] |
| Ojeras/periorbital |
i-PRF inyección subdérmica |
[C] |
| Alopecia |
i-PRF mesoterapia capilar |
[C] |
| Cicatrices acné |
i-PRF + microneedling + subcisión |
[C] |
| Arrugas periorales |
i-PRF micropápulas |
[C] |
§8 PRF vs PRP — Comparativa Clínica
8.1 Tabla comparativa general
| Parámetro |
PRP |
PRF |
Ventaja |
| Anticoagulante |
Sí |
No |
PRF — más fisiológico |
| Activación |
Exógena (trombina/CaCl₂) |
Autoactivación |
PRF — más simple |
| Número centrifugaciones |
1-2 (doble spin) |
1 |
PRF — más rápido |
| Matriz de fibrina |
No (o débil) |
Sí — tridimensional |
PRF — scaffold natural |
| Leucocitos |
Variable (L-PRP vs P-PRP) |
Siempre incluidos (L-PRF) |
PRF — modulación inmune |
| Liberación GF |
Burst (horas) |
Sostenida (10-14 días) |
PRF — efecto prolongado |
| Concentración GF |
Mayor pico inicial |
Menor pico, mayor AUC |
Empate |
| Forma |
Líquido |
Membrana + líquido (i-PRF) |
PRF — más versátil |
| Ventana de trabajo |
Estable (anticoagulante) |
10-15 min (i-PRF) |
PRP — más flexible |
| Coste |
Mayor (kits, activadores) |
Menor (solo tubos + centrífuga) |
PRF |
| Estandarización |
Múltiples clasificaciones |
Protocolos definidos (LSCC) |
Empate |
| Evidencia global |
[A] (miles de estudios) |
[B-C] (creciente, aún menor volumen) |
PRP |
| Regulación |
Autólogo, mínima manipulación |
Autólogo, mínima manipulación |
Empate |
8.2 Comparativa por indicación
| Indicación |
PRP |
PRF |
Evidencia comparativa |
| Alopecia (AGA) |
↑↑↑ |
↑↑ |
PRP: más evidencia [A]; PRF: datos prometedores [C] |
| Rejuvenecimiento facial |
↑↑ |
↑↑ |
Similar eficacia; PRF mejor textura, PRP mejor pigmentación [B] (Sollitto 2025) |
| Periorbital |
↑↑ |
↑↑ |
PRF: textura/arrugas; PRP: pigmentación [B] |
| Cicatrices |
↑↑ |
↑ |
PRP más estudiado [B]; PRF + microneedling prometedor [C] |
| Regeneración ósea |
↑ |
↑↑↑ |
PRF claramente superior — membrana, sticky bone [A] |
| Úlceras crónicas |
↑↑ |
↑↑ |
Ambos eficaces; PRF membrana ventaja logística [B] |
| Tendinopatías |
↑↑↑ |
↑ |
PRP dominante [A]; PRF escasos datos |
| OA rodilla |
↑↑↑ |
↑ |
PRP nivel [A]; PRF: exploratorio [C] |
8.3 Cinética comparada de liberación de GF (representación ASCII)
Nivel
GF (%)
100 |*
|**
80 |* *
|* *
60 |* *
|* * PRF (AUC mayor)
40 |* * .............................
|* * .. ..
20 |* * .. ..
|* ** .. PRP (pico alto, corta duracion) ..
0 |*__________*.*__________________________________________*.
0 6h 1 3 5 7 10 14 21 Dias
Leyenda: * = PRP . = PRF
Interpretación clínica: PRP alcanza concentraciones pico de PDGF y TGF-β1 más altas en las primeras horas, pero decae rápidamente. PRF libera cantidades moderadas pero sostenidas durante hasta 14 días, con mayor AUC total [B] (Dohan Ehrenfest 2009; Kobayashi 2016; Miron 2017).
8.4 Análisis de costes comparativo
| Concepto |
PRP |
PRF |
| Centrífuga |
€2.000-15.000 |
€2.000-8.000 |
| Kit por sesión |
€50-200 (tubos + anticoagulante + activador) |
€5-30 (tubos sin aditivo) |
| Tiempo preparación |
20-30 min (doble spin) |
10-15 min (single spin) |
| Personal necesario |
Técnico/enfermería |
Técnico/enfermería |
| Coste/paciente/sesión |
€80-250 (materiales) |
€20-60 (materiales) |
El coste por sesión de PRF es significativamente inferior al de PRP, lo cual favorece protocolos multisesión y mayor accesibilidad.
§9 Seguridad, Contraindicaciones e Interacciones
9.1 Perfil de seguridad
PRF comparte el perfil de seguridad autólogo del PRP: producto derivado de la propia sangre del paciente → riesgo alérgico/inmunogénico prácticamente nulo.
| Evento adverso |
Frecuencia |
Manejo |
| Equimosis en zona de inyección |
Frecuente (30-50%) |
Compresión, arnica, resolución 5-7 días |
| Edema local |
Frecuente |
Frío local, resolución 24-48 h |
| Dolor en punto de inyección |
Ocasional |
Analgesia simple (paracetamol) |
| Infección |
Rara (<1%) |
Técnica aséptica estricta |
| Hematoma en zona de venopunción |
Ocasional |
Compresión |
| Reacción vasovagal |
Ocasional |
Posición supina, hidratación previa |
| Necrosis vascular |
Extremadamente rara |
Misma precaución que con fillers (periorbital, glabela) |
| Granuloma |
No descrito |
— |
9.2 Contraindicaciones
Absolutas
| Contraindicación |
Fundamento |
| Trombocitopenia severa (<50.000/μL) |
Insuficiente contenido plaquetario |
| Coagulopatía severa no controlada |
Riesgo hemorrágico en venopunción e inyección |
| Sepsis / bacteriemia activa |
Riesgo de concentrar patógenos en el producto |
| Neoplasia activa en zona de tratamiento |
Factores de crecimiento podrían promover proliferación tumoral |
| Infección activa en zona de tratamiento |
Riesgo de diseminación |
| Hemoglobina <10 g/dL (anemia severa) |
Volumen extracción comprometido, rendimiento bajo |
Relativas
| Contraindicación |
Consideración |
| Anticoagulación oral (warfarina, DOACs) |
No suspender sin consenso hematología; mayor riesgo equimosis |
| Antiagregación (aspirina, clopidogrel) |
Ver §9.3 |
| Uso de corticoides sistémicos |
Pueden reducir eficacia biológica del PRF |
| Embarazo/lactancia |
Falta de datos; precaución |
| Enfermedad autoinmune activa |
Modulación impredecible de la respuesta inmune |
| Tabaquismo activo |
↓ Función plaquetaria, ↓ respuesta regenerativa |
| Diabetes mal controlada (HbA1c >8%) |
Función plaquetaria y cicatrización comprometidas |
| Neoplasia en remisión |
Valorar riesgo-beneficio individuado; intervalo mínimo post-tratamiento oncológico |
9.3 Interacciones farmacológicas
| Fármaco |
Efecto sobre PRF |
Recomendación |
| AINEs (ibuprofeno, naproxeno) |
Inhiben COX → ↓ función plaquetaria |
Suspender 7 días antes si posible |
| Aspirina (dosis antiagregante) |
↓ Agregación plaquetaria irreversible |
Suspender 7-10 días antes (si cardiólogo lo permite) |
| Clopidogrel |
↓ Agregación plaquetaria |
Suspender 5-7 días (consultar cardiólogo) |
| DOACs (rivaroxabán, apixabán) |
Anticoagulación; no afectan plaquetas directamente |
No suspender para PRF; mayor riesgo equimosis |
| Warfarina |
Anticoagulación |
INR <3.0 aceptable para venopunción; no suspender sin hematología |
| Corticoides sistémicos |
↓ Respuesta inflamatoria y regenerativa |
Postergar si es posible; resultado subóptimo |
| Corticoides tópicos |
Efecto local sobre cicatrización |
Suspender en zona tratada 1 semana antes |
| Fluoroquinolonas |
Inhiben proliferación fibroblástica in vitro |
Precaución teórica; sin impacto clínico demostrado |
| Metformina |
Posible ↓ actividad plaquetaria |
No requiere ajuste |
| Quimioterapia |
↓↓ Recuento y función plaquetaria |
Contraindicado durante tratamiento activo |
| Inmunosupresores (MTX, ciclosporina) |
↓ Respuesta regenerativa |
Resultado subóptimo; valorar caso a caso |
9.4 Riesgo específico del timing — Coagulación prematura
ALGORITMO DE DECISIÓN: PROBLEMA DE COAGULACIÓN EN TUBO
=======================================================
Sangre extraída
|
v
Colocar en centrífuga
en < 90 segundos?
|
+----+----+
| |
Sí No
| |
v v
Centrifugar Se observa coágulo
normalmente en el tubo?
|
+----+----+
| |
Sí No (aún líquido)
| |
v v
==DESCARTAR== Centrifugar
tubo y inmediatamente
repetir (resultado puede
extracción ser subóptimo)
9.5 Control de infección
| Medida |
Detalle |
| Entorno |
Sala limpia (no necesariamente quirófano) |
| Guantes |
Estériles para manipulación de membranas |
| Preparación piel |
Clorhexidina 2% o povidona yodada |
| Material |
Tubos, jeringas, agujas estériles y de un solo uso |
| Centrífuga |
Limpieza con desinfectante tras cada uso |
| Residuos |
Contenedor biosanitario grupo III (sangre) |
| Trazabilidad |
Etiquetar tubos con nombre paciente + fecha |
9.6 Aspectos regulatorios (España)
- PRF se considera producto autólogo de mínima manipulación → no requiere autorización como medicamento (similar a PRP)
- Real Decreto 1277/2003: procedimiento debe realizarse en centro sanitario autorizado
- AEMPS: no clasifica PRF como medicamento de terapia avanzada (al no haber manipulación sustancial)
- El profesional debe documentar el proceso, lote de tubos, parámetros de centrifugación y consentimiento informado
- Consentimiento informado específico: debe incluir alternativas (PRP, HA, etc.), riesgos, y naturaleza experimental de algunas indicaciones estéticas
9.7 Checklist de seguridad pre-procedimiento
- [ ] Historia clínica completa (medicación, alergias, coagulopatías)
- [ ] Analítica reciente: hemograma con plaquetas (mínimo 100.000/μL), coagulación
- [ ] Suspensión AINEs 7 días antes (si aplica)
- [ ] Consentimiento informado firmado
- [ ] Verificar tubos: sin anticoagulante, fecha caducidad, integridad
- [ ] Centrífuga calibrada y verificada (RCF conocida)
- [ ] Material de emergencia disponible (reacción vasovagal)
- [ ] Etiquetar tubos con identificación del paciente
- [ ] Cronómetro preparado antes de venopunción
- [ ] Fotografía estandarizada pre-tratamiento
9.8 Manejo de complicaciones
| Complicación |
Acción inmediata |
Seguimiento |
| Reacción vasovagal |
Trendelenburg, líquidos orales, monitorizar |
Observación 15-30 min |
| Equimosis extensa |
Frío local, árnica |
Resolución 7-14 días |
| Infección local |
Cultivo + antibioterapia empírica (amoxicilina-clavulánico) |
Revisión 48 h |
| Dolor persistente (>48 h) |
Descartar infección / hematoma |
Ecografía si dudas |
| Compromiso vascular (raro) |
Hialuronidasa si se combinó con HA; nitroglicerina tópica; derivación urgente |
Protocolo igual que necrosis por filler |
Anexo A — Árbol de decisión: PRP vs PRF según indicación
PACIENTE CANDIDATO A
TERAPIA REGENERATIVA AUTOLOGA
|
v
+-----------------------------+
| Indicacion principal? |
+-----------------------------+
| |
+----------+ +----------+
| |
ESTETICA REGENERACION
FACIAL OSEA/TISULAR
| |
v v
+---------------+ +----------------+
| Objetivo? | | PRF (membrana) |
+---------------+ | A-PRF+ o L-PRF |
| | +----------------+
v v |
TEXTURA VOLUMEN Combinar con
ARRUGAS RELLENO biomateriales?
| | |
v v +----+----+
i-PRF + EZ Gel PRF Si No
micro- [C] o | |
needling HA + i-PRF v v
[C] secuencial Sticky Membrana
bone sola + PRF
+----------------+ [B] plug [B]
| Alopecia? |
+----------------+
| |
v v
Evidencia Coste
maxima minimo
| |
v v
PRP [A] i-PRF [C]
Anexo B — Quick Reference Card
+==============================================================+
| PRF QUICK REFERENCE — CONSULTA RAPIDA |
+==============================================================+
| |
| i-PRF: 700 rpm (~60g) | 3 min | tubo plastico | LIQUIDO |
| A-PRF+: 1300 rpm (~200g)| 8 min | tubo vidrio | MEMBRANA |
| L-PRF: 2700 rpm (~400g)|12 min | tubo vidrio | MEMBRANA |
| |
| TIMING CRITICO: < 90 seg extraccion --> centrifuga |
| i-PRF tiempo trabajo: 10-15 min antes de gelificar |
| |
| Suspender AINEs: 7 dias antes |
| Plaquetas minimo: 100.000/uL |
| Tubos por sesion facial: 4-6 |
| Sesiones tipicas: 3-4 cada 3-4 semanas |
| |
+==============================================================+
Referencias clave
- Choukroun J et al. PRF: a second-generation platelet concentrate. Oral Surg Oral Med Oral Pathol 2006; 101(3):e37-44.
- Ghanaati S et al. LSCC — low speed centrifugation concept. Eur J Trauma Emerg Surg 2017.
- Fujioka-Kobayashi M et al. Optimized PRF with the low-speed concept: growth factor release, biocompatibility, and cellular response. J Periodontol 2017; 88(1):112-121.
- Miron RJ et al. Ten years of injectable platelet-rich fibrin. Periodontology 2000 2024; 94:218-237.
- Sollitto A et al. PRP vs PRF for periorbital rejuvenation: a systematic review. J Cosmet Dermatol 2025.
- Herrera-Vizcaíno C et al. AR2T3: standardized reporting for PRF centrifugation. Front Oral Maxillofac Med 2023.
- Kobayashi M et al. A-PRF+: growth factor release and cell response. J Periodontol 2016.
- Wang X et al. Microneedling with i-PRF for facial rejuvenation. Plast Aesthet Res 2021.
- Dohan Ehrenfest DM et al. Classification of platelet concentrates. Trends Biotechnol 2009; 27(3):158-167.
- Miron RJ et al. Extended PRF. Periodontology 2000 2024.
Última actualización: 2026-03-15